Bombycoidea
Graellsia isabellae ♂ (Saturniidae)
Classificazione scientifica
Dominio	Eukaryota
Regno	Animalia
Sottoregno	Eumetazoa
Superphylum	Protostomia
Phylum	Arthropoda
Subphylum	Tracheata
Superclasse	Hexapoda
Classe	Insecta
Sottoclasse	Pterygota
Coorte	Endopterygota
Superordine	Oligoneoptera
Sezione	Panorpoidea
Ordine	Lepidoptera
Sottordine	Glossata
Infraordine	Heteroneura
Divisione	Ditrysia
Superfamiglia	Bombycoidea Latreille, 1802
Sinonimi
Sphingoidea Latreille, 1802
Famiglie
Anthelidae Apatelodidae Bombycidae Brahmaeidae Carthaeidae Endromidae Eupterotidae Phiditiidae Saturniidae Sphingidae

I Bombicoidei (Bombycoidea Latreille, 1802)^[1] sono una superfamiglia di lepidotteri, diffusa in tutti i continenti con oltre 6 000 specie.^[2][3][4]

Il nome della superfamiglia deriva da quello del genere tipo, Bombyx Linnaeus, 1758,^[5] a sua volta ricavato dal termine latino bombyx (baco da seta).^[6]

Dimorfismo sessuale in Caligula japonica (Saturniidae): si noti, oltre alla forma e alla colorazione delle ali, la differente struttura delle antenne del maschio (a sinistra) rispetto alla femmina

Si tratta di falene eteroneure appartenenti ai Ditrysia, di dimensione media o grande, con abitudini tendenzialmente notturne o crepuscolari, e solitamente robuste e dotate di buona capacità di volo. Il torace e l'addome appaiono spesso ricoperti da una fitta peluria. Il dimorfismo sessuale può essere anche macroscopico, e interessare sia la forma e il colore delle ali, sia altre strutture anatomiche, come ad esempio le antenne, che possono essere più frequentemente pettinate o bipettinate negli esemplari di sesso maschile. Una caratteristica alquanto diffusa è rappresentata dalla riduzione o assenza di diverse strutture immaginali, quali ad esempio le appendici boccali.^[3][7]

La superfamiglia, che rivela forti affinità con i Lasiocampoidea e i Mimallonoidea, risulta essere certamente monofiletica, sulla base di quattro caratteri autapomorfici, che si possono così riassumere: 1) procoxe fuse anteriormente tra loro nella larva di ultima età; 2) sull'ottavo somite addominale, setola dorsale D1 sorretta da una protuberanza mesodorsale (di solito uno scolus); 3) ala anteriore con Rs₁+Rs₂ vicina e parallela a Rs₃+Rs₄, o addirittura fusa con essa; 4) nel genitale maschile, posizione modificata dei "muscoli 4".^[8] Va specificato che l'assenza del primo carattere negli Apatelodidae e in alcuni Eupterotidae,^[9] così come l'assenza del secondo carattere negli Eupterotidae stessi e in pochi altri gruppi (Apatelodidae), è da considerarsi un'evoluzione secondaria.^[3][7]

L'occhio composto può rivelare o meno la presenza di setole interommatidiali. Non sono presenti ocelli funzionali né veri e propri chaetosemata.^[3][7]

Le antenne possono essere bi-, tri- o quadripettinate, con la sola eccezione degli Sphingidae, nei quali subiscono modificazioni secondarie; in quest'ultima famiglia, si possono osservare antenne filiformi, con apice uncinato, ma anche antenne clavate simili a quelle dei Papilionoidea.^[3][7]

Le appendici boccali sono solitamente ridotte oppure del tutto assenti, seppur con diverse eccezioni. I palpi mascellari sono spesso vestigiali, mentre quelli labiali possono essere da ridotti a molto sviluppati e ascendenti. La spirotromba è di regola ridotta (ad esempio nei Bombycidae e negli Eupterotidae) o del tutto assente (molti Saturniidae), ma può essere ben sviluppata e superare anche diverse volte l'intera lunghezza del corpo, come nel caso degli Sphingidae appartenenti alla sottofamiglia Sphinginae.^[3][7]

Nel mesotorace, la coxa si articola in un meron e un epimeron, uniti da una linea di giunzione lunga o abbastanza lunga. Il metascuto è diviso in parte o completamente in due sezioni in senso antero-posteriore. Non sono presenti organi timpanici toracici.^[3][7]

Nell'ala anteriore, Sc è spesso unita per un tratto più o meno lungo con R₁, o comunque corre parallela e molto ravvicinata a quest'ultima; i rami di Rs possono essere tutti liberi oppure essere uniti parzialmente o completamente in combinazioni differenti; in alcuni casi Rs₁+Rs₂ può costituire il margine anteriore di un'areola; M presenta di solito tre rami che corrono separatamente dal margine esterno della cellula discale fino al termen; CuA è presente con due rami mentre CuP è di regola assente o vestigiale; 1A+2A presenta di solito una biforcazione basale più o meno allungata, mentre 3A è assente.^[3][7]

L'ala posteriore ha sempre una venulazione molto differente e più semplificata rispetto all'anteriore: la regione omerale può essere particolarmente sviluppata; Sc ed R₁ sono di solito parzialmente o completamente fuse tra loro, e in alcuni casi anche con la porzione discale o postdiscale di Rs; i rami di Rs sono di regola ridotti a uno solo, che corre molto vicino e parallelo a Sc+R; sono presenti i tre rami di M e i due di CuA, mentre CuP è di norma assente o vestigiale; 1A+2A è di solito priva di biforcazione basale, mentre 3A può essere presente, ma con un percorso ridotto.^[3][7]

Nell'accoppiamento alare, frenulum e retinaculum possono essere ben robusti e articolati, come in alcuni Sphingidae, ma di regola sono ridotti o completamente assenti, e si può avere un accoppiamento di tipo amplessiforme (ad es. negli Endromidae).^[7] A differenza dei Lasiocampoidea, qui non si rileva la presenza di una spinarea. L'apice può essere falcato, come nel caso di alcuni Bombycidae e Saturniidae, ma più spesso è arrotondato.^[3][7][10]

Nelle zampe, l'epifisi può essere fortemente ridotta, e talvolta assente, mentre la formula degli speroni tibiali può essere 0-2-4 (ad es. negli Eupterotidae), 0-2-2 (come negli Endromidae) o anche 0-2-3 (alcuni Saturniidae); le tibie possono avere spinule omogenee oppure di grandezza differente, o ancora esserne del tutto prive; la forma, il numero e la grandezza delle spine rette dai tarsomeri possono assumere valore tassonomico (vedere in proposito la chiave dicotomica proposta di seguito), così come la presenza e la struttura delle appendici rette dal pretarso, quali arolio, empodio, pulvilli, unghie e così via.^[3][7]

Come nel torace, anche nell'addome non sono presenti organi timpanici. Sulla superficie dei tergiti possono essere presenti delle spinule, molto più rare sugli sterniti (p. es. negli Anthelidae).^[3][7]

Nell'apparato riproduttore maschile, uncus e gnathos possono essere ben sviluppati e talvolta anche bilobati, oppure essere del tutto assenti, a seconda del gruppo preso in considerazione; l'edeago può essere dotato di un coecum penis anche allungato, oltre che di uno o più cornuti disposti lungo la vesica.^[3][7]

Nel genitale femminile, il corpus bursae può essere ridotto e privo di signum, ad esempio nei Carthaeidae, ma anche sviluppato e provvisto di robusti signa, come nel caso di alcuni Saturniidae e Sphingidae; anche la lunghezza del ductus bursae può variare notevolmente, come pure quella delle apofisi anteriori e posteriori.^[3][7]

L'uovo ha spesso una forma sferoidale, come in molti Sphingidae, oppure appiattita e pseudocilindrica, come negli Endromidae o nei Saturniidae, con un chorion relativamente liscio, sebbene negli Eupterotidae e nei Brahmaeidae sia frequente la forma verticale. Le uova vengono talvolta deposte in gran numero e in particolari formazioni costituite da più file ordinate, che possono essere molto caratteristiche.^[3][7]

La larva possiede di regola setole primarie, più raramente secondarie (ad es. nei Bombycidae), ma l'aspetto macroscopico può essere riassunto in due tipologie diverse: il corpo può essere densamente rivestito di lunghi peli, come nel caso degli Anthelidae, Apatelodidae, Eupterotidae e alcuni Brahmaeidae, oppure può essere pressoché privo di peli evidenti, come nei Bombycidae, Carthaeidae, Endromidae, Saturniidae, Sphingidae e nella maggior parte dei Brahmaeidae; nel secondo caso, almeno nei primi stadi larvali, è frequente la presenza di un processo dorsale sull'VIII segmento addominale, oltre che di un paio di altre protuberanze (cornetti, scoli e così via) su alcuni o tutti i segmenti toracici. I peli possono essere urticanti^[11] e in alcune specie gli scoli possono rilasciare sostanze più o meno tossiche, accumulate dal bruco con funzione difensiva.^[12] Colorazioni sgargianti e aposematismi più o meno evidenti non sono rari, come nel caso di Carthaea saturnioides.^[3][7]

Il capo è di solito piccolo rispetto al resto del corpo, soprattutto negli ultimi stadi di sviluppo, con un apparato boccale di tipo ipognato, a indicare un tipo di alimentazione non condotta all'interno di mine, bensì all'aperto, sulla lamina fogliare. Il frontoclipeo è talvolta alquanto allungato. Sono presenti normalmente sei stemmata per lato, spesso disposti su un arco più o meno regolare.^[13]

I segmenti toracici possono talvolta essere allargati e provvisti di evidenti macchie ocellate sui lati, come nel caso dei Saturniidae della sottofamiglia Oxyteninae, o di alcuni Sphingidae; questa caratteristica, associata una postura "minacciosa", costituita dal capo ritirato nel protorace e dai segmenti toracici sollevati, può talvolta ricordare la testa di un piccolo serpente, e avere funzione di difesa quando l'animale viene dispurbato. Lo scudo protoracico può essere alquanto sviluppato e sclerificato, come nel caso di alcuni Saturniidae, ma spesso il secondo e il terzo segmento toracico appaiono notevolmente più sviluppati rispetto al primo (ad es. nei Bombycidae).^[3][7][13]

I segmenti addominali possono rivelare macchie ocellate in corrispondenza della linea degli spiracoli, come nel caso dei Carthaeidae.^[7] Spesso sono presenti uno o due processi dorsali sull'VIII segmento addominale; nel caso degli Sphingidae, il cosiddetto "cornetto caudale" può essere notevolmente sviluppato già nelle prime fasi di sviluppo, ma in alcuni casi può essere ridotto ad una semplice protuberanza, o anche mancare del tutto.^[13][14]

La larva matura ha cinque coppie di pseudozampe, robuste ma non molto allungate, sui segmenti III-VI e X; l'ultimo paio di pseudopodi, quello anale, appare spesso più sviluppato dei precedenti.^[3] Nelle pseudozampe, gli uncini sono di regola robusti e disposti su linee ellittiche incomplete, costituite da uno o più spesso due ordini.^[7][13]

La pupa è obtecta, tozza e ovoidale (Saturniidae) oppure più fusiforme (Sphingidae), con tegumento scuro e fortemente sclerificato e antenne ridotte; la spirotromba, laddove presente, è fusa col resto del corpo. L'addome è munito di due soli segmenti mobili, A5 e A6, facilmente distinguibili, e in alcuni casi può presentare una minuta dentellatura dorsale. Non sono frequenti setole secondarie e il cremaster, quando presente, è normalmente costituito da una serie di setole uncinate, poste all'estremità caudale. Il bozzolo sericeo, di regola presente, è spesso elaborato e in talune specie assume rilevanza commerciale (ad es. nei Bombycidae).^[3][7]

Le uova vengono deposte sulle foglie delle piante ospiti, singolarmente, oppure in formazioni talvolta ordinate e molto caratteristiche; l'adesione al substrato è assicurata dalla presenza di una sostanza viscosa prodotta da alcune ghiandole accessorie della femmina durante la deposizione, come nel caso dei Saturniidae.^[3][7]

Tranne poche eccezioni, sia le larve, sia gli adulti sono principalmente attivi durante la notte.^[7]

Qualora siano disturbati, alcuni bruchi sono in grado di emettere suoni (una sorta di schiocchi ottenuti dalla ripetuta chiusura delle mandibole), che in parte sono percepibili anche dall'uomo, e che spesso precedono o accompagnano il rigurgito di sostanze tossiche precedentemente accumulate; è possibile che tale comportamento, riscontrato ad esempio nelle larve di Antheraea polyphemus (Saturniidae), sia da considerarsi una forma di "aposematismo acustico", dal momento che si sarebbe dimostrato efficace nella difesa contro piccoli predatori, quali formiche o topolini.^[15]

In alcuni gruppi può essere presente il fenomeno del gregarismo nello stadio larvale, soprattutto nelle fasi iniziali dello sviluppo (ad es. negli Eupterotidae), con un grande numero di bruchi che si alimentano insieme, protetti da una sorta di "rete" di fibre intessute attorno alla pianta nutrice.^[7]

L'impupamento può aver luogo in un bozzolo fissato alla pianta nutrice, oppure nella lettiera superficiale del sottobosco, come negli Sphingidae.^[7][13][16]

Il bozzolo, che negli Anthelidae è a doppio strato, è essenzialmente costituito da fibre sericee estruse dalla larva e intessute grazie alla filiera; esso può anche contenere setole secondarie oppure spinule irritanti di protezione, incorporate dalla larva durante le fasi di tessitura; nei Carthaeidae si è anche notata la presenza di piccolissimi granuli di sabbia tra le fibre intessute. Il bozzolo può anche non essere prodotto e l'impupamento può avvenire nel terreno, non molto in profondità (in alcuni Saturniidae), o nelle fessure tra le pietre (nei Brahmaeidae).^[7][17]

Gli adulti sono solitamente forti volatori, come nel caso degli Sphingidae, che possono essere in grado di spostarsi anche da un continente all'altro; nei Carthaeidae e in alcuni Sphingidae e Saturniidae, talvolta, quando l'animale viene disturbato, tende a muovere ritmicamente le ali anteriori e a portare in evidenza le macchie ocellate presenti su quelle posteriori, nel tentativo di distogliere l'eventuale predatore dall'aggressione.^[7][17]

La fase immaginale di solito si alimenta del nettare dei fiori, benché gli adulti dei Saturniidae abbiano le parti boccali fortemente ridotte e gran parte dell'apparato digerente risulti assente. Al contrario, alcuni sphingidae riescono a raggiungere il nettare senza posarsi sul fiore e rimanendo in volo stazionario, in modo simile a quello di un colibrì.^[7][17]

Durante le fasi dell'accoppiamento, un ruolo importante è giocato dagli feromoni sessuali che guidano l'adulto nella ricerca del partner; questi possono essere rilasciati dagli androconia, gruppi di scaglie piliformi riunite all'interno di particolari invaginazioni presenti sulle ali dei maschi degli Sphingidae.^[7]

Le specie appartenenti a questo taxon possono avere un ciclo univoltino, ma anche bi- o trivoltino, come nel caso di alcuni Saturniidae. Per quanto riguarda le specie univoltine, il periodo di volo è di solito corrispondente coi mesi centrali dell'estate e lo stadio svernante può essere rappresentato dalla pupa nel terreno, come in alcuni Sphingidae, oppure dalla larva o ancora dall'uovo, come per alcuni Saturniidae.^[13]

Queste larve non sono minatrici fogliari, ma al contrario si alimentano posate sulle parti vegetali (principalmente le foglie).^[3][7][17]

Considerando la vastità del gruppo e la presenza di specie polifaghe, è pressoché impossibile fornire un elenco esaustivo delle piante nutrici. In questa sede, ci si limiterà pertanto a una semplice lista delle principali famiglie di appartenenza delle essenze vegetali su cui si accrescono le larve, al fine dare un'idea di quanto sia ampia la gamma di possibili piante ospiti.^[18]

Considerata la rilevante quantità di dati disponibili, ci si limiterà, in questa sede, a citare esclusivamente le famiglie di imenottei e di ditteri che comprendono specie in grado di attuare forme di parassitoidismo ai danni delle larve o delle uova di Bombycoidea.^[19][20]

• Diptera Linnaeus, 1758
  • Oestroidea Leach, 1815
    • Tachinidae Robineau-Desvoidy, 1830
• Hymenoptera Linnaeus, 1758
  • Chalcidoidea Latreille, 1817
    • Chalcididae Latreille, 1817
    • Encyrtidae Walker, 1837
    • Eulophidae Westwood, 1829
    • Eupelmidae Walker, 1833
    • Eurytomidae Walker, 1832
    • Mymaridae Haliday, 1833
    • Perilampidae Latreille, 1809
    • Pteromalidae Dalman, 1820
    • Torymidae Walker, 1833
    • Trichogrammatidae Haliday & Walker, 1851
  • Ichneumonoidea Latreille, 1802
    • Braconidae Nees, 1812
    • Ichneumonidae Latreille, 1802

La specie Bombyx mori (Linnaeus, 1758) (baco da seta, Bombycidae), di origine asiatica, è allevata almeno da cinque millenni per la produzione di seta, e riveste attualmente una grande importanza nell'industria tessile.^[21]

Nella seconda metà del XIX secolo, si tentò di importare dall'Asia alcune specie di Saturniidae sericigene, al fine di studiare un'alternativa alla produzione di seta da parte di B. mori, che in quel momento era soggetto a gravi malattie di allevamento; tra queste, solo due specie si sono in seguito acclimatate in modo stabile (Samia cynthia e Antheraea yamamai), e sono presenti anche sul territorio italiano.^[22][23][24]

Bombyx mori è utilizzata come organismo modello per studi farmacologici concernenti la cinetica di assorbimento di determinati principi attivi.^[25][26] Va peraltro ricordato che grazie a questa specie fu scoperto nel 1959 il primo feromone sessuale noto, il bombicolo (10-12-esadecadien-1-olo), in seguito impiegato nella lotta integrata al fine di ridurre l'utilizzo di fitofarmaci.^[27][28]

Le larve di svariate specie di Saturniidae e di alcuni Sphingidae sono utilizzate per l'alimentazione umana in alcune zone dell'Africa subsahariana, nonché in alcune parti dell'America centrale e dell'Indocina.^[29] A tale proposito, va ricordato che il consumo di 100 g di bruchi essiccati fornisce mediamente circa il 76 % del fabbisogno individuale giornaliero di proteine e oltre il 100 % di quello di sali minerali e vitamine.^[30]

Diverse specie di Bombycoidea possono avere un impatto più o meno rilevante sulla resa qualitativa e quantitativa di diverse piante da frutto, sul patrimonio di piante ornamentali o anche su altri tipi di coltivazioni, quali il tabacco; la maggior parte di queste appartiene alle famiglie Sphingidae e Saturniidae.^[23]

Un notevole interesse è incentrato su Manduca sexta (Linnaeus, 1763) (sfinge del tabacco), le cui larve possono arrecare danno, oltre che a questa pianta, anche ad altre solanaceae quali il Capsicum annuum (peperone/peperoncino), il pomodoro e la patata.^[31]

Altri sfingidi degni di nota per il loro impatto sui raccolti oppure sulle piante ornamentali, sono:^[23]

• Acherontia atropos (Linnaeus, 1758) (sfinge testa di morto), per solanacee (patata, melanzana, pomodoro) ma anche ligustro, olivo, vite, oleandro e frassino^[32]
• Agrius convolvuli (Linnaeus, 1758) (sfinge del convolvolo), per il convolvolo e la patata dolce^[33]

• Daphnis nerii (Linnaeus, 1758) (sfinge dell'oleandro), per oleandri, pervinche e, talvolta, la vite^[23]
• Deilephila elpenor (Linnaeus, 1758) (sfinge della vite), appunto, per la vite^[23]
• Deilephila porcellus (Linnaeus, 1758), per Galium ed Epilobium^[23]
• Hippotion celerio (Linnaeus, 1758), talvolta per la vite^[23]
• Hyles euphorbiae (Linnaeus, 1758) (sfinge dell'euforbia), per varie Euphorbiaceae e per la vite^[23]

• Hyles gallii (Rottemburg, 1775) (sfinge del Galium), per betulle, epilobi, fuchsie e salici^[23]
• Hyles livornica (Esper, 1780), per piante coltivate (olivo, vite, piante da frutto) ma anche ornamentali (acacie, eucalipti, corbezzoli)^[23][34][35]

• Laothoe populi (Linnaeus, 1758) (sfinge del pioppo), per pioppi e salici^[23]
• Macroglossum stellatarum (Linnaeus, 1758) (sfinge colibrì), per i Galium^[23][36]
• Mimas tiliae (Linnaeus, 1758) (sfinge del tiglio), per tigli, ontani, olmi, querce e diversi alberi da frutto^[23]

• Smerinthus ocellata (Linnaeus, 1758) (sfinge dagli occhi), per salici, pioppi e tigli, talvolta piante da frutto^[23]
• Sphinx ligustri Linnaeus, 1758 (sfinge del ligustro), per ligustri e altre Oleaceae (olivo, frassino, fillirea)^[23]

• Sphinx pinastri Linnaeus, 1758 (sfinge del pino), per pini e pecci^[37]

Tra i Saturniidae, per quanto riguarda i possibili danni arrecati a piante da frutto oppure ornamentali, possiamo citare:^[23]

• Aglia tau (Linnaeus, 1758), per faggi e altre latifoglie^[23]
• Antheraea yamamai (Guénerin-Méneville, 1861), per le querce^[22]

• Samia cynthia (Drury, 1773) (bombice dell'ailanto o filosamia), per ailanti, ligustri, ricini, prugni, peri, sambuchi e noci^[38]
• Saturnia pavonia (Linnaeus, 1758) (pavonia minore), per Rumex, Potentilla, Rubus, otre a varie pomacee^[39]
• Saturnia pyri (Denis & Schiffermüller, 1775) (saturnia del pero o pavonia maggiore), per peri, meli e altri fruttiferi^[40]

In alcuni casi, sono anche stati segnalati danni al patrimonio forestale, arrecati dalle seguenti specie:^[23]

• Brahmaea europaea Hartig, 1963 (Brahmaeidae), per ligustri e frassini^{[41][42][43][44]}
• Endromis versicolora (Linnaeus, 1758) (bombice variegato o falsa sfinge della betulla, Endromidae) soprattutto per betulle, e in misura minore per ontani, carpini e noccioli^[42][45]

Le tecniche di lotta contro le avversità appartenenti ai Bombycoidea sono le più varie, ma si possono ricondurre alle seguenti metodiche:^[28]

• lotta biologica, effettuata prevalentemente tramite l'utilizzo di parassitoidi come particolari ditteri e imenotteri, che agiscono sugli stadi immaturi (uova e larve; vedi apposito paragrafo)
• lotta biotecnica, attuata con l'impiego di specifici virus, nematodi o batteri (ad esempio Bacillus thuringiensis)
• confusione sessuale, provocata grazie all'immissione in ambiente di piccole quantità di feromone sessuale che riducono la capacità riproduttiva della specie dannosa (può essere ricondotta anch'essa ad un concetto più ampio di lotta biotecnica)

I Bombycoidea sono presenti in tutti i continenti (esclusa l'Antartide), anche se non con ogni famiglia. Più in dettaglio, i Saturniidae e gli Sphingidae sono cosmopoliti, i Bombycidae e gli Eupterotidae sono presenti ovunque tranne in Europa e Nordamerica, i Brahmaeidae si trovano in Eurasia e Africa, gli Endromidae solo in Eurasia, gli Apatelodidae solo nelle Americhe, i Phiditiidae solo in Sudamerica, mentre gli Anthelidae e i Carthaeidae sono presenti esclusivamente in Oceania. In generale, comunque, la maggiore ricchezza di specie si riscontra nelle regioni tropicali e subtropicali.^{[3][7][13][17]}

Viene di seguito riportata una chiave dicotomica per il riconoscimento della famiglia di appartenenza, ricavata da quella proposta da Claude Lemaire & Joël Minet (1999), in cui è preso in considerazione il solo stadio adulto; va specificato che oltre alle famiglie attualmente (2017) inserite nei Bombycoidea, vengono qui riportati anche i Lasiocampidae e i Mimallonidae, oggi spostati nelle rispettive superfamiglie monotipiche, ma in passato considerati appartenenti a questo taxon o comunque in forte affinità con esso; nella chiave non sono prese in considerazione le famiglie Phiditiidae e Apatelodidae, qui considerate all'interno dei Bombycidae.^[3]

Il taxon è cosmopolita e comprende 10 famiglie, per un totale di 520 generi e 6.092 specie, così suddivisi:^[4]

Anthelidae Turner, 1904 - Trans. Ent. Soc. Lond. 1904: 470 (chiave); 478 (come Lymantriadae, Anthelinae)^[46] - 2 sottofamiglie, 9 generi, 94 specie; Oceania

Anthelinae Turner, 1904 - Trans. Ent. Soc. Lond. 1904: 470 (chiave); 478 (come Lymantriadae, Anthelinae)^[46] - 7 generi, 91 specie; Oceania

Munychryiinae Common & McFarland, 1970 - J. Aust. Ent. Soc. 9: 11^[47] - 2 generi, 3 specie; Oceania

Apatelodidae Neumoegen & Dyar, 1894 - J. N.Y. Ent. Soc. 2(3): 112 (chiave) (come Notodontidae, Apatelodinae)^[48] - 12 generi, 182 specie; Americhe

= Zanolidae McDunnough, 1938 - Mem. sth. Calif. Acad. Sci. 1: 138^[49]

Bombycidae Latreille, 1802 - Hist. nat. ins. 3: 404 (come Bombycinae)^[1] - 2 sottofam., 27 generi, 202 specie; America centrale e meridionale, Asia, Africa e Oceania

Bombycinae Latreille, 1802 - Hist. nat. ins. 3: 404 (come Bombycinae)^[1] - 18 generi, 101 specie; America centrale e meridionale, Asia, Africa e Oceania

Epiinae Draudt & Schauss, 1929 - In: Seitz, Gross-Schmett. Erde 6: 675^[50] - 8 generi, 100 specie; America centrale e meridionale

incertae sedis - 1 genere, 1 specie (fossile)

Brahmaeidae Swinhoe, 1892 - Cat. east. and Aust. Lep. Het. Colln Oxf. Univ. Mus. 1: 253^[51] - 6 generi, 68 specie; Eurasia e Africa

= Lemoniidae Hampson, 1918 - Novit. zool. 25: 367 (come Lemoniadae)^[52]

= Sabaliidae Hampson, 1901 - Trans. Ent. Soc. Lond. 1901(2): 187 (come Sabaliadae)^[53]

Carthaeidae Common, 1966 - Aus. J. Ent. 5: 29^[54] - 1 genere, 1 specie, Oceania

Endromidae Boisduval, 1828 - Eur. Lepid. Index meth.: 50 (come Endromidi)^[55] - 16 generi, 70 specie; Eurasia

= Mirinidae Kozlov, 1985 - Vest. Leningr. gos. Univ. (Biol.) 1985(4): 3^[56]

= Oberthueriinae Kuznetzov & Stekolnikov, 1985 - Trudy zool. Inst. 134: 3^[8]

= Prismostictinae Forbes, 1955 - Tijdschr. Ent. 98: 120^[57]

Eupterotidae Swinhoe, 1892 - Cat. east. and Aust. Lep. Het. Colln Oxf. Univ. Mus. 1: 271^[51] - 4 s.fam. + 1 gruppo, 60 gen., 396 spp.; Asia, Africa, Oceania, Centro- e Sudam.

Eupterotinae Swinhoe, 1892 - Cat. east. and Aust. Lep. Het. Colln Oxf. Univ. Mus. 1: 271^[51] - 11 generi, 105 specie; Asia, Africa, Oceania, Centro- e Sudamerica

= Cotaninae Forbes, 1955 - Tijdschr. Ent. 98: 131 (come Cotanini)^[57]

Janinae Aurivillius, 1902 - Bih. Svenska Akad. 27(7): 4 (chiave)^[58] - 22 generi, 148 specie; Africa

= Hibrildinae Berger, 1958 - Lambillionea 57(9-10): 73^[59]

= Tissanginae Forbes, 1955 - Tijdschr. Ent. 98: 98 (come Tissangini)^[57]

Panacelinae Forbes, 1955 - Tijdschr. Ent. 98: 120^[57] - 1 genere, 3 specie; Oceania

Striphnopteryginae Wallengren, 1858 - Ofvers. K. Vetensk Akad. Förh. 15: 210 (come Striphnopteryges)^[60] - 16 generi, 83 specie; Africa e Oceania

= Phialinae Wallengren, 1865 - Het.-fjär. saml. Kaff. Wahlberg: 33 (come Phialidae)^[61]

Gruppo Ganisa - 10 generi, 57 specie

Phiditiidae Minet, 1994 - Ins. Syst. Evol. 25(1): 63 (come Bombycidae, Phiditiinae)^[62] - 4 generi, 23 specie; America meridionale

Saturniidae Boisduval, 1834 - Icones hist. Lepid. Eur. 2: 170 (come Saturnides)^[63] - 8 sottofamiglie, 180 generi, 2.349 specie; cosmopolita

Agliinae Packard, 1893 - Ann. Mag. nat. Hist. (6) 11: 172^[64] - 1 genere, 6 specie; Eurasia

Arsenurinae Jordan, 1922 - Novit. zool. 29: 250^[65] - 10 generi, 137 specie; Americhe

= Rhescyntinae Bouvier, 1930 - Bull. Hill Mus. Witley 4: 3 (come Rhescyntidae)^[66]

Ceratocampinae Harris, 1841 - Rep. Insects Mass. injurious Vegn.: 287 (come Ceratocampadae)^[67] - 31 generi, 195 specie; Americhe

= Adelocephalinae Boisduval, 1872 - Annls Soc. ent. Belg. 15: 79 (come Adélocéphalides)^[68]

= Citheroniinae Neumoegen & Dyar, 1894 - J. N.Y. ent. Soc. 2: 174 (come Citheroniidae)^[48]

= Dryocampinae Grote & Robinson, 1866 - Ann. Lyc. nat. Hist. 8: 379 (come Dryocampini)^[69]

= Sphingicampinae Packard, 1901 - Psyche, Camb. 9: 280 (come Sphingicampidae)^[70]

= Syssphinginae Packard, 1914 - Mem. natn. Acad. Sci. 12: 1 (come Syssphingina)^[71]

Cercophaninae Jordan, 1924 - Novit. zool. 31: 181 (come Cercophanidae)^[72] - 4 generi, 16 specie; America meridionale

Hemileucinae Grote & Robinson, 1866 - Ann. Lyc. nat. Hist. 8: 376 (come Hemileucini)^[69] - 51 generi, 797 specie; Americhe

= Automerinae Grote, 1896 - Mitt. Roemermus. Hildes. 6: 3; 27^[73]

= Dirphiinae Burmeister, 1878 - Descr. phys. Rép. Arg. 5 (Lépid. I): 473 (come Dirphiadae)^[74]

Oxyteninae Jordan, 1924 - Novit. zool. 31: 135 (come Oxytenidae)^[72] - 5 generi, 36 specie; Americhe

Salassinae Michener, 1949 - Evolution, Lancaster, Pa. 3(2): 130^[75] - 1 genere, 37 specie; Asia

Saturniinae Boisduval, 1834 - Icones hist. Lepid. Eur. 2: 170 (come Saturnides)^[63] - 77 generi; 1.125 specie; cosmopolita

= Attacinae Duponchel, 1844 - Cat. méth. Lépid. Eur.: 78 (come Attaccidae)^[76]

= Bunaeinae Cooper, 2002 - In: Cooper & Cooper, The emperor moths of KwaZulu-Natal: x^[77]

= Holocerinae Packard, 1914 - Mem. natn. Acad. Sci. 12: 144^[71]

= Ludiinae Aurivillius, 1904 - Ark. Zool. 2(4): 21^[78]

Sphingidae Latreille, 1802 - Hist. nat. ins. 3: 400 (come Sphingides)^[1] - 4 sottofamiglie, 206 generi, 1.824 specie; cosmopolita

Langiinae Tutt, 1904 - Nat. hist. Brit. Lep. 4: 504 (come Langiidi)^[79] - 1 genere, 1 specie; Asia

Macroglossinae Harris, 1839 - Am. J. Sci. Arts 36: 287 (come Macroglossiadae)^[80] - 84 generi, 1.011 specie; cosmopolita

= Choerocampinae Grote & Robinson, 1865 - Proc. ent. Soc. Philad. 5: 153 (come Chaerocampini)^[81]

= Dilophonotinae Burmeister, 1878 - Descr. physique Rep. Arg. 5 (Lepid. 1): 314 (chiave) (come Dilophonotidae)^[74]

= Philampelinae Burmeister, 1878 - Descr. physique Rep. Arg. 5 (Lepid. 1): 314 (chiave) (come Philampeliadae)^[74]

= Semanophorinae Rothschild & Jordan, 1903 - Novit. zool. 9 (Suppl.): cxxxv (come Semanophorae)^[82]

Smerinthinae Grote & Robinson, 1865 - Proc. ent. Soc. Philad. 5: 160 (come Smerinthini)^[81] - 69 generi, 478 specie; cosmopolita

= Ambulicinae Butler, 1876 - Trans. zool. Soc. Lond. 9: 514^[83]

Sphinginae Latreille, 1802 - Hist. nat. ins. 3: 400 (come Sphingides)^[1] - 52 generi, 334 specie; cosmopolita

= Acherontiinae Butler, 1876 - Trans. zool. Soc. Lond. 9: 515^[83]

= Asemanophorinae Rothschild & Jordan, 1903 - Novit. zool. 9 (Suppl.): cxxxv (come Asemanophorae)^[82]

Va peraltro aggiunto che fino agli anni novanta del XX secolo, la famiglia Sphingidae veniva inserita in una superfamiglia distinta (Sphingoidea), sulla base di alcune differenze anatomiche (soprattutto immaginali) rispetto al resto dei Bombycoidea.^[17]

È stato riportato un sinonimo:

• Sphingoidea Latreille, 1802 (incl.) - Hist. nat. ins. 3: 400 (come Sphingides)^[1]

L'unica specie endemica del territorio italiano è il brameide Brahmaea (Acanthobrahmaea) europaea Hartig, 1963, il cui areale è limitato alle sole province di Potenza, Matera e Avellino.^{[41][42][43][44]}

Kristensen nel 1998 propose un albero filogenetico che collocava, all'interno dei Macrolepidoptera, il gruppo Mimallonoidea/Lasiocampoidea/Bombycoidea in una posizione distinta rispetto al clade comprendente Calliduloidea, Papilionoideae Geometroidea, ma anche rispetto a quello dei Noctuoidea:^[3]

L'analisi genetica svolta da Heikkila et al. (2015)^[84] ha invece portato alla luce nuove relazioni tra le superfamiglie, tanto da giungere a un cladogramma da cui è stato ricavato quello riportato qui sotto; è confermata la prossimità evolutiva dei Bombycoidea rispetto ai Lasiocampoidea, ma i Mimallonoidea sono spostati in posizione diversa:

Come si può notare dallo schema riportato qui sopra, Bombycoidea si conferma certamente come raggruppamento monofiletico, così come le famiglie che lo compongono. L'unica evidente incongruenza rispetto all'impostazione tassonomica riportata più sopra, riguarda la posizione dei generi di Brahmaeidae: infatti, laddove Brahmaea appare un sister group degli Sphingidae nella loro interezza, al contrario, Dactyloceras, Lemonia e Sabalia risulterebbero essere più affini al clade Apatelodidae/Eupterotidae. Heikkila e coll. hanno spiegato questo risultato con la possibile carenza di materiale genetico analizzato e con il tipo di caratteri morfologici immaginali presi in considerazione.^[84]

• 
  Anthela acuta
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Anthela nicothoe
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Anthela ocellata
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Anthela tetraphrica
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Anthela varia
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Chenuala heliaspis
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Nataxa flavescens
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Pterolocera leucocera
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Munychryia senicula
  (Anthelidae, Munychryiinae)
• 
  Apatelodes palma
  (Apatelodidae, Apatelodinae)
• 
  Apatelodes pandarioides
  (Apatelodidae, Apatelodinae)
• 
  Apatelodes torrefacta
  (Apatelodidae, Apatelodinae)
• 
  Apatelodes turrialba
  (Apatelodidae, Apatelodinae)
• 
  Olceclostera angelica
  (Apatelodidae, Apatelodinae)
• 
  Tamphana marmorea
  (Apatelodidae, Epiinae)
• 
  Anticla antica
  (Bombycidae)
• 
  Bombyx incomposita
  (Bombycidae)
• 
  Colla opalifera
  (Bombycidae)
• 
  Gunda ochracea
  (Bombycidae)
• 
  Triuncina brunnea
  (Bombycidae)
• 
  Brahmaea certhia
  (Brahmaeidae)
• 
  Brahmaea europaea
  (Brahmaeidae)
• 
  Brahmaea hearseyi
  (Brahmaeidae)
• 
  Brahmaea japonica
  (Brahmaeidae)
• 
  Brahmaea wallichii
  (Brahmaeidae)
• 
  Spiramiopsis comma
  (Brahmaeidae)
• 
  Endromis vesicolora
  (Endromidae)
• 
  Mustilia gerontica
  (Endromidae)
• 
  Prismosticta regalis
  (Endromidae)
• 
  Apona fuliginosa
  (Eupterotidae, Eupterotinae)
• 
  Eupterote asclepiades
  (Eupterotidae, Eupterotinae)
• 
  Pseudojana perspicuifascia
  (Eupterotidae, Eupterotinae)
• 
  Jana tantalus
  (Eupterotidae, Janinae)
• 
  Stenoglene roseus
  (Eupterotidae, Janinae)
• 
  Panacela lewinae
  (Eupterotidae, Panacelinae)
• 
  In F: Phiditia diores
  (Phiditiidae)
• 
  Aglia tau
  (Saturniidae, Agliinae)
• 
  Copiopteryx jehovah
  (Saturniidae, Arsenurinae)
• 
  Rhescyntis pseudomartii
  (Saturniidae, Arsenurinae)
• 
  Titaea timur
  (Saturniidae, Arsenurinae)
• 
  Citheronia phoronea
  (Saturniidae, Ceratocampinae)
• 
  Dryocampa rubicunda
  (Saturniidae, Ceratocampinae)
• 
  Microdulia mirabilis
  (Saturniidae, Cercophaninae)
• 
  Automeris io
  (Saturniidae, Hemileucinae)
• 
  Hemileuca maia
  (Saturniidae, Hemileucinae)
• 
  Pseudautomeris luteata
  (Saturniidae, Hemileucinae)
• 
  Oxytenis mirabilis
  (Saturniidae, Oxyteninae)
• 
  Oxytenis modestia
  (Saturniidae, Oxyteninae)
• 
  Therinia lactucina
  (Saturniidae, Oxyteninae)
• 
  Salassa lola
  (Saturniidae, Salassinae)
• 
  Actias sinensis
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Antheraea celebensis
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Archaeoattacus edwardsii
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Bunaea aslauga
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Eudaemonia troglophylla
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Eupackardia calleta
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Rotschildia cincta
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Langia zenzeroides
  (Sphingidae, Langiinae)
• 
  Aellopos ceculus
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Amphion floridensis
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Angonyx testacea
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Cephonodes hylas
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Daphnis nerii
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Deilephila elpenor
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Deilephila porcellus
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Hemaris fuciformis
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Hippotion celerio
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Adhemarius donysa
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Amorpha juglandis
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Callambulyx junonia
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Daphnusa ocellaris
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Mimas tiliae
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Protambulyx eurycles
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Smerinthus ocellata
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Acherontia atropos
  (Sphingidae, Sphinginae)
• 
  Anambulyx elwesi
  (Sphingidae, Sphinginae)
• 
  Cocytius antaeus
  (Sphingidae, Sphinginae)
• 
  Coelonia fulvinotata
  (Sphingidae, Sphinginae)
• 
  Euryglottis guttiventris
  (Sphingidae, Sphinginae)

• 
  Andraca theae
  (Endromidae)
• 
  Sphingicampa bicolor
  (Saturniidae, Ceratocampinae)
• 
  Automeris io
  (Saturniidae, Hemileucinae)
• 
  Actias luna
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Deilephila elpenor
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Hemaris fuciformis
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Hyles euphorbiae
  (Sphingidae, Macrogloss.)
• 
  Macroglossum stellatarum
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Pseudosphinx tetrio
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Laothoe populi
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Marumba quercus
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Manduca blackburni
  (Sphingidae, Sphinginae)

• 
  Anthela varia
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Chelepteryx collesi
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Chenuala heliaspis
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Apatelodes sp.
  (Apatelodidae, Apatelodinae)
• 
  Apatelodes pudefacta
  (Apatelodidae, Apatelodinae)
• 
  Apatelodes torrefacta
  (Apatelodidae, Apatelodinae)
• 
  Prothysana terminalis
  (Bombycidae)
• 
  Carthaea saturnioides
  (Carthaeidae)
• 
  Andraca theae
  (Endromidae)
• 
  Endromis versicolora
  (Endromidae)
• 
  Aglia tau
  (Saturniidae, Agliinae)
• 
  Arsenura drucei
  (Saturniidae, Arsenuriinae)
• 
  Arsenura batesii
  (Saturniidae, Arsenuriinae)
• 
  Anisota virginiensis
  (Saturniidae, Ceratocampinae)
• 
  Citheronia splendens
  (Saturniidae, Ceratocampinae)
• 
  Syssphinx hubbardi
  (Saturniidae, Ceratocampinae)
• 
  Automeris illustris
  (Saturniidae, Hemileucinae)
• 
  Automeris egeus
  (Saturniidae, Hemileucinae)
• 
  Leucanella leucane
  (Saturniidae, Hemileucinae)
• 
  Actias dubernardi
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Antheraea mylitta
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Graellsia isabellae
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Amphion floridensis
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Basiothia schenki
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Daphnis nerii
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Deilephila elpenor
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Coequosa triangularis
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Laothoe populi
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Paonias excaecatus
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Acherontia atropos
  (Sphingidae, Sphinginae)
• 
  Ceratomia undulosa
  (Sphingidae, Sphinginae)
• 
  Manduca sexta
  (Sphingidae, Sphinginae)
• 
  Sphinx ligustri
  (Sphingidae, Sphinginae)

• 
  Bozzolo di Chelepteryx collesi
  (Anthelidae, Anthelinae)
• 
  Andraca theae
  (Endromidae)
• 
  Anisota virginiensis
  (Saturniidae, Ceratocampinae)
• 
  Sphingicampa bicolor
  (Saturniidae, Ceratocampinae)
• 
  Coloradia pandora
  (Saturniidae, Hemileucinae)
• 
  Actias selene
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Antheraea yamamai
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Callosamia promethea
  (Saturniidae, Saturniinae)
• 
  Macroglossum stellatarum
  (Sphingidae, Macroglossinae)
• 
  Mimas tiliae
  (Sphingidae, Smerinthinae)
• 
  Acherontia atropos
  (Sphingidae, Sphinginae)
• 
  Agrius convolvuli
  (Sphingidae, Sphinginae)
• 
  Manduca sexta
  (Sphingidae, Sphinginae)

Di seguito le specie di Bombycoidea inserite nella Lista rossa IUCN, con il relativo stato di conservazione:

• Saturniidae
  • Graellsia isabellae (Graëlls, 1849) - status "DD" (carente di dati)^[85]
• Sphingidae
  • Euproserpinus wiesti Sperry, 1939 - status "CR" (in pericolo critico)^[86]
  • Hyles hippophaes (Esper, 1793) - status "DD" (carente di dati)^[87]
  • Proserpinus proserpina (Pallas, 1772) - status "DD" (carente di dati)^[88]
  • Tinostoma smaragditis (Meyrick, 1899) - status "EN" (in pericolo)^[89]