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Heliozelidae
Gli Eliozelidi (Heliozelidae Heinemann & Wocke, 1876)[1] sono una famiglia di lepidotteri, diffusa in tutti i continenti con 125 specie.[2][3][4][5][6]
Etimologia
[modifica | modifica wikitesto]Il nome del taxon è dovuto alla combinazione del termine greco ἤλιος (hélios) = sole, con quello tardo latino zelare = desiderare, per il fatto che queste falene sono solite volare alla piena luce del sole, con l'aggiunta del suffisso -idae, che indica una famiglia.[7][8][9][10]
Descrizione
[modifica | modifica wikitesto]Adulto
[modifica | modifica wikitesto]La famiglia è rappresentata da minuscole falene diurne, piuttosto primitive, con nervatura alare di tipo eteroneuro e apparato riproduttore femminile provvisto di un'unica apertura per l'accoppiamento e per l'ovodeposizione;[3][4][5] per quest'ultima caratteristica anatomica, in passato venivano collocate all'interno della divisione Monotrysia, oggi considerata obsoleta in quanto polifiletica.[2][3][5][11][12]
In questo taxon è presente il processo tergosternale sul primo segmento addominale, tipico della maggior parte degli Adeloidea.[3][5][14][15]
Le ali sono lanceolate, spesso grigio-brunastre, con macchie argentate su parte dell'ala anteriore, nella quale il tornus non è individuabile. L'ala posteriore presenta apice appuntito, è più corta dell'anteriore e adorna di una lunga peluria. Si osserva una marcata riduzione delle nervature alari, sia longitudinali, sia trasversali: nell'ala posteriore, la trasversale M-CuA è assente (carattere considerato autapomorfico), mentre l'anale è singola. Il settore radiale (Rs) è inoltre ridotto, ed anche media e cubito spesso non sono ramificati (p. es. nel genere Heliozela).[3][16]
L'accoppiamento alare è di tipo frenato (con frenulum più robusto nei maschi), mentre è presente l'apparato di connessione tra ala anteriore e metatorace; si può inoltre riscontrare un ponte precoxale.[3][14][16][17][18][19][20]
Il capo è insolitamente ispido di scaglie (altro autapomorfismo), benché queste ultime si trovino addossate alla capsula cefalica in prossimità del vertice.[3][21]
Le antenne sono poco più corte della costa dell'ala anteriore: sono sottili e non ciliate. Lo scapo non presenta un pecten.[3][21]
Gli occhi sono glabri. Gli ocelli sono assenti, come pure i chaetosemata. I palpi mascellari sono molto ridotti, con cinque articoli e privi di invaginazioni; quelli labiali sono pendenti, sottili e trisegmentati; la spirotromba è completa, a differenza di quanto si osserva nei Cecidosidae, con scaglie in prossimità della base.[3][14][16][21][22]
Nelle zampe, l'epifisi è presente, mentre gli speroni tibiali hanno formula 0-2-4.[3][5][14][16][21]
L'apparato genitale maschile rivela, su ogni valva, una struttura a pettine detta pectinifer.[3][5][14][16]
Nel genitale femminile, l'ovopositore è ben sviluppato e di tipo perforante, tipico degli Adeloidea, al fine di permettere l'inserimento delle uova all'interno dei tessuti fogliari della pianta ospite.[3][5][14][16]
L'apertura alare può variare da 5 a 8 mm, a seconda della specie.[21]
Uovo
[modifica | modifica wikitesto]Le uova, inserite singolarmente nei tessuti della pianta ospite, assumono la forma della "tasca" che le ospita.[3]
Larva
[modifica | modifica wikitesto]Il bruco possiede solitamente un capo prognato.[3][14][23]
Le zampe toraciche sono di regola assenti, ma nei generi in cui si osservano, appaiono ben sviluppate; le pseudozampe sono quasi sempre assenti o vestigiali, con uncini (quando presenti) disposti su file multiple. Spesso al posto delle pseudozampe si notano dei calli ambulacrali, che in alcune specie di Antispila Hübner, 1825 e Coptodisca Walsingham, 1895, sono fusi assieme. Uno o più calli può essere riscontrato anche dorsalmente, sull'ottavo segmento addominale.[3][5][14][21][23]
Pupa
[modifica | modifica wikitesto]La pupa o crisalide, spesso lunga solo 2 o 3 mm, è exarata con antenne corte ed un lungo labrum, che si spinge fin oltre i palpi labiali. Le appendici sono libere e ben distinte, mentre la maggior parte dei segmenti addominali sono mobili (pupa dectica). Gli spiracoli di Antispila pfeifferella (Denis & Schiffermüller, 1775) sono sorretti da processi, posti ai lati dell'addome.[3][14][23][24][25]
Biologia
[modifica | modifica wikitesto]Comportamento
[modifica | modifica wikitesto]Le uova vengono deposte una per volta, solitamente al di sotto dell'epidermide di un ramoscello della pianta ospite, talvolta anche direttamente nel picciolo di una foglia. La larva, che è di regola una minatrice fogliare, si fa strada verso il picciolo e poi verso la lamina della foglia, producendo caratteristiche mine fogliari. Queste ultime possono avere percorso serpentiniforme (ofionomi) oppure possono apparire come chiazze espanse, dai bordi più o meno lineari (stigmatonomi o fisonomi). In alcune specie, la larva scava inizialmente all'interno delle nervature della foglia, prima di passare al parenchima della lamina vera e propria. Al termine della fase di accrescimento all'interno delle mine, la larva costruisce un involucro ovale a partire da due lembi di epidermide fogliare, che lascia come ultimo risultato una sorta di foro ovoidale nella pagina della foglia; a questo punto si lascia cadere verso il fusto della pianta ospite o sul terreno, ove porta a termine il proprio sviluppo.[3][23] L'impupamento avviene quasi sempre sul terreno, ma in alcune specie il bozzolo rimane adeso ai ramoscelli della pianta nutrice.[3]
Sono note anche specie nordamericane formanti cecidi (galle).[13]
Alimentazione
[modifica | modifica wikitesto]Le larve degli eliozelidi si accrescono su un ampio spettro di piante nutrici, con diverse specie polifaghe che, in alcuni casi, si cibano di tutti i membri di uno o più generi, oppure una singola essenza in particolare. Fa seguito un elenco parziale di generi e specie attaccati da questi bruchi:[3][13][23][26]
- Alnus glutinosa L. (Betulaceae)
- Ampelopsis brevipedunculata (Maxim.) Trautv. (Vitaceae)
- Arbutus menziesii Pursh (Ericaceae)
- Betula papyrifera Marsh. (Betulaceae)
- Betula pubescens Ehrh. (Betulaceae)
- Callistemon R.Br. (Myrtaceae)
- Carya illinoinensis (Wangenh.) K.Koch (Juglandaceae)
- Castanea crenata Siebold & Zucc. (Fagaceae)
- Cayratia trifolia (L.) Domin (Vitaceae)
- Cercocarpus ledifolius Nutt. (Rosaceae)
- Cissus L. (Vitaceae)
- Cleyera japonica Thunb. (Theaceae)
- Cornus alba L. (Cornaceae)
- Cornus brachypoda C. A. Mey. (Cornaceae)
- Cornus canadensis L. (Cornaceae)
- Cornus controversa Hemsl. (Cornaceae)
- Cornus florida L. (Cornaceae)
- Cornus mas L. (Cornaceae)
- Cornus sanguinea L. (Cornaceae)
- Cornus sericea L. (Cornaceae)
- Crataegus parvifolia Willd. ex Torr. & A.Gray (Rosaceae)
- Diospyros virginiana L. (Ebenaceae)
- Distylium racemosum Sieb. et Zucc. (Hamamelidaceae)
- Eucalyptus L'Hér. (Myrtaceae)
- Eugenia rhombea Krug & Urb. ex Urb. (Myrtaceae)
- Gaylussacia baccata (Wangenh.) K. Koch (Ericaceae)
- Hydrangea arborea Hort. ex Lavallée (Hydrangeaceae)
- Hydrangea macrophylla (Thunb.) Ser. (Hydrangeaceae)
- Hydrangea petiolaris Siebold & Zucc. (Hydrangeaceae)
- Hydrangea radiata Walter (Hydrangeaceae)
- Juglans nigra L. (Juglandaceae)
- Kalmia angustifolia L. (Ericaceae)
- Krugiodendron ferreum (Vahl) Urb. (Rhamnaceae)
- Lannea coromandelica (Houtt.) Merr. (Anacardiaceae)
- Malus Tourn. ex L. (Rosaceae)
- Nauclea orientalis (L.) L. (Rubiaceae)
- Nyssa sylvatica Marsh. (Nyssaceae)
- Ostrya Scop. (Corylaceae)
- Parthenocissus quinquefolia (L.) Planch. (Vitaceae)
- Parthenocissus tricuspidata (Siebold & Zucc.) Planch. (Vitaceae)
- Bistorta officinalis Delarbre (Polygonaceae)
- Psychotria dalzellii Hook.f. (Rubiaceae)
- Pyrus L. (Rosaceae)
- Quercus agrifolia Née (Fagaceae)
- Quercus gambelii Nutt. (Fagaceae)
- Quercus petraea (Mattuschka) Liebl. (Fagaceae)
- Quercus pubescens Willd. (Fagaceae)
- Quercus robur L. (Fagaceae)
- Quercus serrata Murray (Fagaceae)
- Quercus suber L. (Fagaceae)
- Quercus wislizeni A.DC. (Fagaceae)
- Reynosia latifolia Griseb. (Rhamnaceae)
- Rhizophora mangle L. (Rhizophoraceae)
- Ribes cereum Dougl. (Grossulariaceae)
- Salix lasiolepis Benth. (Salicaceae)
- Syzygium cumini (L.) Skeels (Myrtaceae)
- Vaccinium arboreum Marshall (Ericaceae)
- Vaccinium macrocarpon Aiton (Ericaceae)
- Vitis aestivalis Michx. (Vitaceae)
- Vitis arizonica Engelm. (Vitaceae)
- Vitis coignetiae Pulliat ex Planch. (Vitaceae)
- Vitis labrusca L. (Vitaceae)
- Vitis flexuosa Thunb. (Vitaceae)
- Vitis labruscana (Vitaceae)
- Vitis riparia Michx. (Vitaceae)
- Vitis vinifera L. (Vitaceae)
- Vitis vulpina L. (Vitaceae)
Parassitoidismo
[modifica | modifica wikitesto]Sono noti da tempo fenomeni di parassitoidismo ai danni delle uova o dei bruchi di Heliozelidae, da parte di imenotteri appartenenti alle superfamiglie Chalcidoidea e Ichneumonoidea; tuttavia questi antagonisti naturali non sempre riescono a limitare i danni arrecati dalle larve alle foglie delle piante ospiti.[8][27][28][29][30][31][32]
Tra le moltissime specie di imenotteri responsabili di parassitoidismo nei confronti degli eliozelidi, citiamo:[33][34]
- Famiglia Eulophidae Westwood, 1829
- Achrysocharoides budensis (Erdos, 1954)
- Baryscapus nigroviolaceus (Nees, 1834)
- Chrysocharis coptodiscae Yoshimoto, 1973
- Chrysocharis nepherea (Walker, 1839)
- Chrysocharis nitetis (Walker, 1839)
- Chrysocharis occidentalis (Girault, 1916)
- Chrysocharis paradoxa Hansson, 1985
- Chrysocharis pentheus (Walker, 1839)
- Chrysocharis splendidissima (Girault, 1917)
- Cirrospilus coptodiscae (Girault, 1916)
- Cirrospilus diallus Walker, 1838
- Cirrospilus flavicinctus Riley, 1883
- Cirrospilus marilandi Girault, 1917
- Cirrospilus pictus (Nees, 1834)
- Cirrospilus talitzkii Boucek, 1961
- Cirrospilus variegatus (Masi, 1907)
- Cirrospilus viticola (Rondani, 1877)
- Cirrospilus vittatus Walker, 1838
- Closterocerus cinctipennis Ashmead, 1888
- Closterocerus trifasciatus Westwood, 1833
- Elasmus albicoxa Howard, 1885
- Elasmus aspidiscae Girault, 1917
- Elasmus flabellatus (Fonscolombe, 1832)
- Elasmus hyblaeae Ferriere, 1929
- Minotetrastichus frontalis (Nees, 1834)
- Neochrysocharis formosa (Westwood, 1833)
- Pediobius anomalus (Gahan, 1920)
- Pediobius saulius (Walker, 1839)
- Pnigalio kopetdagensis Myartseva & Kurashev, 1990
- Pnigalio maculipes (Crawford, 1913)
- Pnigalio minio (Walker, 1847)
- Pnigalio pallipes (Provancher, 1887)
- Pnigalio pectinicornis (Linnaeus, 1758)
- Pnigalio uroplatae (Howard, 1885)
- Ratzeburgiola incompleta Boucek, 1971
- Tetrastichus spp. Haliday, 1844
- Famiglia Braconidae C.G.D.Nees, 1812
- Centistidea ectoedemiae Rohwer, 1914
- Colastes braconius Haliday, 1833
- Colastes flavitarsis (Thomson, 1892)
- Mirax aspidiscae Ashmead, 1893
- Mirax coptodiscae Walley, 1941
- Mirax minuta Ashmead, 1893
- Pseudognaptodon omissus Fischer, 1965
- Pseudognaptodon whartoni Williams, 2004
- Famiglia Encyrtidae Walker, 1837
- Parablastothrix nearctica Miller, 1965
Rilevanza economica
[modifica | modifica wikitesto]Poiché le larve sono molto attive come minatrici fogliari, questa famiglia di lepidotteri risulta particolarmente interessante per le ricadute economiche che comporta, sia a carico del patrimonio forestale, sia di quello agricolo; è il caso per esempio di Holocacista rivillei (Stainton, 1855), che è in grado di produrre da 70-100 fino a 350 mine su una singola foglia di vite, provocando serie conseguenze sulla qualità e quantità della produzione vinicola.[8][27][35]
Un caso emerso solo negli ultimi anni, è quello di Antispila oinophylla van Nieukerken & Wagner, 2012, specie nordamericana inizialmente scambiata per la congenere A. ampelopsifoliella Chambers, 1874, che, a partire dal 2006, si sta diffondendo nei vigneti di Trentino e Veneto, arrecando seri danni alla produzione di vitigni quali Moscato e Chardonnay.[13][32]
Ancora più recente è l'introduzione nel territorio italiano di un'altra specie aliena, Coptodisca juglandella Chambers, 1874, la cui prima segnalazione risale a settembre 2010, su piantagioni di noce bianco (Juglans regia) nel Lazio e in Campania.[36]
Metodi di lotta
[modifica | modifica wikitesto]Finora i metodi di lotta integrata hanno visto l'impiego congiunto di insetticidi (quali gli esteri fosforici) con antagonisti naturali delle larve, come i suddetti imenotteri calcidoidei.[32]
Distribuzione e habitat
[modifica | modifica wikitesto]La famiglia è cosmopolita, pur con una maggiore biodiversità in America Settentrionale e Australia; è tuttavia assente dalla Nuova Zelanda.[3][13][16][37]
L'habitat è rappresentato da boschi e foreste a latifoglie.[3]
Tassonomia
[modifica | modifica wikitesto]Sinonimi
[modifica | modifica wikitesto]Non sono stati riportati sinonimi.[38]
Generi
[modifica | modifica wikitesto]La famiglia si compone, a livello mondiale, di 12 generi, per un totale di 125 specie[2]; di questi, 5 generi e 10 specie sono presenti in Europa, mentre solo 4 generi e 6 specie sono diffusi anche in Italia. Non sono noti endemismi italiani.[38][39][40]
Alcuni autori[3][37] ascrivono alle Heliozelidae anche il genere Plesiozela Karsholt & Kristensen, 2003, in realtà considerato dai più un sister group rispetto alla famiglia.[41]
- Antispila Hübner, 1825 - Verz. bekannt. Schmett.: 419 (42 specie tra Olartico, Neotropico, Paleotropico ed ecozona orientale, di cui 3 in Europa e 2 in Italia settentrionale)[42]
- Antispilina Hering, 1941 - Dt. ent. Z. Iris 1941: 18 (1 specie in Europa, assente in Italia)[43]
- Coptodisca Walsingham, 1895 - Ent. mon. Mag. 31: 41 (18 specie neartiche, di cui solo una introdotta di recente in Italia Centro-Meridionale)[44]
- Heliozela Herrich-Schäffer, 1853 - Syst. Bearb. Schmett. Europ. 5: 15 (chiave), 56 (genere tipo) (29 specie tra Olartico, ecozona orientale ed Australasia, di cui 4 in Europa e 2 in Italia Settentrionale, Meridionale e Sicilia)[45]
- Holocacista Walsingham & Durrant, 1909 - Trans. ent. Soc. Lond. 1909 (Proc.): xxix (7 specie tra Paleartico, ecozona orientale e paleotropicale, di cui una specie presente anche in Italia Settentrionale, Meridionale e Sicilia)[46]
- Hoplophanes Meyrick, 1897 - Proc. Linn. Soc. N.S.W. 22: 298 (chiave), 409 (19 specie in Australasia)[47]
- Ischnocanaba Bradley, 1961 - Bull. Br. Mus. nat. Hist. (Ent.) 10: 167 (1 specie in Australasia)[48]
- Lamprozela Meyrick, 1916 - Exot. Microlepidopt. 2: 9 (2 specie nell'ecozona orientale)[49]
- Monachozela Meyrick, 1931 - Exot. Microlepidopt. 4: 185 (1 specie neotropicale)[50]
- Phanerozela Meyrick, 1921 - Exot. Microlepidopt. 2: 404 (1 specie neotropicale)[51]
- Pseliastis Meyrick, 1897 - Proc. Linn. Soc. N.S.W. 22: 298 (chiave), 406 (3 specie in Australasia)[47]
- Tyriozela Meyrick, 1931 - Exot. Microlepidopt. 4: 185 (1 specie nel Paleartico Orientale)[50]
Alcune specie
[modifica | modifica wikitesto]-
Antispila isabella
Mina (ofiostigmatonomio) -
Antispila metallella
Larva -
Antispila metallella
Mina (stigmatonomio) -
Antispila nysaefoliella
Mine (stigmatonomi) -
Antispila oinophylla ♀
-
Antispila oinophylla
Mine (stigmatonomi) -
Antispila treitschkiella
Larva -
Antispila treitschkeella
Mina (stigmatonomio) -
Antispila viticordifoliella
Mina (stigmatonomio) -
Heliozela sp.
-
Heliozela hammoniella
Schema della mina (a sinistra) -
Heliozela resplendella
Larva -
Heliozela resplendella
Mine -
Holocacista rivillei
Mine (ofiostigmatonomi)
Conservazione
[modifica | modifica wikitesto]Nessuna specie appartenente a questa famiglia è stata inserita nella Lista rossa IUCN.[52]
Note
[modifica | modifica wikitesto]- ^ Hermann von Heinemann, Maximilian Ferdinand Wocke, Die Schmetterlinge Deutschlands und der Schweiz, vol. 2, 1876, pp. 389-825, (+) 1-102.
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Voci correlate
[modifica | modifica wikitesto]Altri progetti
[modifica | modifica wikitesto]- Wikimedia Commons contiene immagini o altri file su Heliozelidae
- Wikispecies contiene informazioni su Heliozelidae
Collegamenti esterni
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